大多数肽的首选溶剂是超纯抽气水。稀乙酸或氨水分别对于碱性或酸性多肽的溶解很重要。这些方法不溶的多肽, 需要dmf、脲、guanidiniam chloride或acetonitnle来溶解,这些溶剂可能某些实验有副作用。所以我们建议设计多肽时要加注意。
残基ala, cys , ile, leu, met, phe和val将全增加多肽的溶解难度。
您需要特殊的多肽或任何技术帮助,请随时与我们联系。 我们包你完全满意,对于我们不能适当合成的顺序,我们不收费。
◎ 多肽的保存和操作
包装 1mg或更少的多肽按净重包装,声明的小瓶重不含相关抗离子和水。 例如,氨基酸分析决定的肽含量是80%, 在1mg样品中,那么瓶中毛重是1.25mg。
大量的多肽以毛重算。标出的重量含相关抗离子和水, 例如,25mg样品中肽百分比为90%,那么,实际肽量为25mg×90%=22.5mg
不要把肽含量和纯度搞混了。肽的纯度可能是100%, 而肽含量相关带电基团(如arg, lys )的抗离子量和肽亲水性决定。这是合成肽的本身特性。
◎ 冻干肽的保存
所有产品应存于冰箱, 最好为-20℃。多数肽以此方法可以存放几年不变。
◎ 肽溶液的保存
溶液肽远比冻干形式不稳定,溶液应为中性ph(ph5-7), -20℃保存的,为避免样品的反复冻融, 最好分成小样存放。一份样品融冻后未用完, 应扔掉,细菌降解有时会成为溶液肽的麻烦, 为克服此,肽应溶于无菌水, 或肽溶液用0.2μ m滤膜过滤。
◎ 多肽的重建和操作
多数肽溶于无菌蒸溜水。初次溶解时,要注意使初始浓度比要求浓度大,如果多肽仅有限溶解性, 这便允许加入其它溶解剂或缓冲盐。
如果多肽在水中的溶解性有限,有几种选择可帮助溶解:
对碱性肽用稀乙酸(含arg , lys , his)
酸性肽用稀氨水(含asp, glu)
对极疏水的肽用10%有机修饰物(acetonitrnile , methanol)
极不溶的肽用dm50或dmf
guanicline hydrochloride或脲的浓溶液也很有用, 与上述方法合用, 声处理也是溶解多肽的有效手段。
◎ 多肽应用和保存
多肽具广泛的溶解性。多肽不溶的主要问题是形成二级结构。除了最太肽外,这点都会发生, 在有多重疏水残基的肽中更显著。盐会促进二级结构形成。我们建议先在无菌蒸馏水或去离子中溶解多肽。如需要增加溶解率, 可用声处理。溶解仍有问题, 加少量稀乙酸(10%)或氨水,会便于溶解。
要长期保存多肽, 最好冷冻干燥,冷干粉可在-20℃或更低存放几年而很少或无降解。溶液中的多肽远不稳定。 多肽易受细菌降解,应用无菌纯化水溶解。
含有met, cgs或try残基的多肽溶液由于氧化,寿命有限。应溶于无氧溶剂, 为防止重复冻融的破坏, 建议溶解过量的肽的便实验,其余多肽以固体形成保存。
◎ hplc分析和纯化
分析hplc使用柱子和泵系统,可以经受传递高压,这样可以用极细的微粒(3-10μ m)做填料。由此多肽要在几分钟内高度被分析。
hplc分两类:离子交换和反相。 离子交换hplc依*多肽和固相间的直接电荷相互作用。柱子在一定ph范围带有特定电荷衍变成一种离子体,而多肽或多肽混合物,由其氨基酸组成表现出相反电荷。 分离是一种电荷相互作用,通过可变ph, 离子强度, 或两者洗脱出多肽,通常, 先用低离子强度的溶液,以后逐渐加强或一步一步加强,直到多肽火柱中洗脱出。离子交换分离的一个例子使用强阳离子交换柱。如sulfoethylaspartimide通过酸性ph中带正电来分离。
反相hplc条件与正常层析正相反。多肽通过疏水作用连到柱上,用降低离子强度洗脱, 如增加洗脱剂的疏水性。通常柱子由共价吸附到硅上的碳氢烷链构成,这种链长度为g4-g8碳原子。 由于洗脱是一种疏水作用。长链柱比短链对小的, 高带电肽好。另一方面大的疏水肽用短链柱洗脱好。 然而,总体实践中, 这两类柱互变无多少显著差别,别类载体由碳水化合物构成, 比如苯基。
典型的操作常由两绶冲剂组成,0.1%tfa-h2o和80% acetonitrile 0.1%tfa--h2o稀acetonitrile。用线型梯变以每分钟0.5%到1.0%改变的速度混合。常见分析和纯化用柱为4.6×250mm(3-10μ m)和22×250mm(10μ m). 如果用径向填柱,那么大小是8×100(3-10μ m)和25×250mm(10μ m)
大量各种缓冲剂含许多不同试剂,比如heptafluorobutyric酸,0.1%磷酸, 稀he formic酸(5-6%, ph2-4), 10-100mm nh4hco3, 醋酸钠/氨,tfa/tea,磷酸钠或钾,异戊酚。这样许多不同组合可形成缓冲剂,但要注意一点:硅反相柱料不能长时间暴露于高ph,甚至微碱ph, 因为这样会破坏柱子。
目前市面上有多家品牌,主要有abi、roche、bio-rad和mj
荧光定量pcr的技术
定量pcr技术自产生以来,不断发展完善,到目前为止已经非常成熟了。标记方法由最初单一的染料法,发展到了特异性更高的探针法,如taqman、molecular beacon、fret等不同方法的标记探针,其中由于taqman探针的广泛使用,实时定量pcr的方法也称为tagman法。
在过去很长一段时间里,由于pcr检测的灵敏性和不稳定性,容易产生假阳性,国家对这种检测方法在临床上的应用是禁止的。但是随着荧光定量pcr技术的发展成熟和完善,特别是taqman方法的广泛使用,使得荧光定量pcr以一种新的pcr检测技术得以在在临床检测上使用,如对病毒、病菌及其它致病微生物,致病基因的检测。
taqman探针法具有高适应性和可*性,实验结果稳定重复性好;由引物、探针序列和引物探针相互作用关系的双重保证克服了普通pcr的缺陷,现在国家对这方面的限制正逐步解开,目前正在规范相应的法律法规,为荧光定量pcr技术在分子诊断中的广泛使用做准备工作。
最常用的有三种检测模式:
1、r green i检测模式。
2、taqman探针法
3、杂交探针
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